En los cultivos de aguacate Hass, algo extraordinario está ocurriendo a nivel microscópico. Mientras los productores se enfrentan a desafíos como el decaimiento del aguacate causado por Phytophthora cinnamomi, la antracnosis por Colletotrichum gloeosporioides y la búsqueda constante de mayor productividad, la solución está emergiendo desde las profundidades del suelo a través de microorganismos benéficos que funcionan como verdaderos aliados del cultivo. Los avances en biotecnología y en el entendimiento del microbioma del suelo confirman que, cuando se aplican bien, estos organismos ayudan al árbol a defenderse y a producir mejor. La clave es llevar la ciencia al campo con sencillez y orden.

“La integración de bioinsumos en sistemas de Hass requiere validación bajo condiciones locales y adaptación escalonada en programas de manejo integrado, partiendo de ensayos de compatibilidad y persistencia en el suelo”.

DESAFÍOS LOCALES Y POR QUÉ MIRAR AL SUELO

En Colombia, el potencial productivo del Hass choca a menudo con enfermedades del suelo y con presiones poscosecha que se agravan en temporadas de alta humedad. A esto se suman retos logísticos: disponibilidad de agua para aplicaciones al suelo, ventanas cortas para labores, solape de floración y fructificación que complica los intervalos de seguridad de aplicaciones foliares, y la necesidad de compatibilizar tecnologías sin elevar costos. En este contexto, los bioinsumos microbianos ofrecen una vía para reforzar el manejo integrado, siempre que se seleccionen con criterio y se apliquen en los momentos adecuados.

SITUACIÓN ACTUAL DE LA PRODUCTIVIDAD Y SANIDAD EN AGUACATE HASS

La producción nacional de aguacate presenta rendimientos promedio de 6 a 9 t/ha con brechas significativas respecto al potencial genético estimado en plantaciones tecnificadas (>15 t/ha) (Salcedo et al., 2018). Las pérdidas postcosecha pueden alcanzar hasta el 40% debido a problemas fitosanitarios, principalmente antracnosis causada por Colletotrichum gloeosporioides, marchitez vascular por Phytophthora cinnamomi y daños de epidermis relacionados con estrés abiótico y manejo deficiente. Estudios regionales reportan incidencia de lesiones en epidermis hasta del 36% durante periodos críticos de cosecha (Tzec-Interián et al., 2020).

¿CUÁLES SON ENTONCES LAS HERRAMIENTAS EN EL CONTEXTO MICROBIANO QUE PODRÍAMOS ANALIZAR?

Aun cuando las investigaciones recientes, demuestran que la diversidad de especies y la capacidad especifica de producción enzimática y metabólica es vital para el uso adecuado de microrganismos, en el  contexto de aplicación real en campo hoy tenemos limitantes importantes para alcanzar la intensidad de aplicaciones que dichos estudios recomiendan: La cantidad de aplicaciones edáficas que podemos hacer al año, no solo depende por ejemplo de la cantidad de agua disponible, sino de la maquina y de procesos de contratación y uso eficiente de mano de obra, así también, en un contexto de solape de producción, en donde hay flores y frutos durante gran parte del año, las aplicaciones foliares tienen un restricción adicional, deben ir enfocadas en conseguir múltiples soluciones y por tanto la adaptabilidad de las aplicaciones es el factor más limitante.

TRICHODERMA: BIOPROTECCIÓN DESDE LA RAÍZ

Investigaciones con cepas autóctonas de Trichoderma —T. harzianum, T. viride y T. asperellum— han documentado porcentajes de inhibición ‘in vitro’ contra C. gloeosporioides cercanos al 93%, así como supresión significativa de P. cinnamomi en ensayos controlados (Chamarro-Anaya et al., 2025). Los protocolos optimizados recomiendan aplicación de suspensiones concentradas (1×10^8 UFC/mL, 500 mL/planta, intervalos de 14 días) tanto en trasplante como en mantenimiento, complementando con aplicaciones foliares durante periodos de alta presión de inóculo.

Ensayos en plantaciones comerciales indican mejoras significativas en vigor radicular (hasta 80% sobre testigo), reducción de necrosis vascular y limitación de colonización fúngica en raíces. Las especies endofíticas T. asperellum y T. harzianum contribuyen efectivamente al biocontrol del oomiceto patógeno P. cinnamomi, con porcentajes de inhibición del crecimiento radial de hasta 78.32% y reducción de incidencia de enfermedad hasta 95% en condiciones de invernadero (Andrade-Hoyos et al., 2020).

Los mecanismos de biocontrol incluyen:  micoparasitismo directo, antibiosis por metabolitos secundarios no volátiles, producción de enzimas quitinolíticas y competencia por espacio y nutrientes, además de efectos bioestimulantes sobre rutas auxínicas y absorción mineral (Kumar et al., 2023).

Por otro lado, las dosis más recomendadas en campo partiendo de productos comerciales con concentraciones por encima de 8×10^8 UFC/g o ml varían entre los 2 y 3 cc por litro foliar y de 20 gramos en adelante por árbol en época de establecimiento.

“Las pérdidas postcosecha pueden alcanzar hasta el 40% debido a problemas fitosanitarios, principalmente antracnosis causada por Colletotrichum gloeosporioides, marchitez vascular por Phytophthora cinnamomi y daños de epidermis relacionados con estrés abiótico y manejo deficiente”.

APLICACIONES Y MECANISMOS DE BACILLUS SPP. EN SISTEMAS DE HASS

El género Bacillus, incluyendo B. subtilis y B. amyloliquefaciens, ha sido validado como agente multifuncional para el control de podredumbres radiculares, antracnosis y mejora del comportamiento postcosecha del Hass. Aplicaciones foliares con concentraciones de 1×10^7 a 1×10^8 UFC/mL han producido reducciones de hasta el 64.68% en crecimiento micelial de P. cinnamomi y disminución significativa del avance de necrosis vascular en ensayos ‘ex vivo’ (Gómez-Garay et al., 2023).

Bacillus amyloliquefaciens demostró capacidad inhibitoria efectiva contra P. cinnamomi mediante contacto directo con las hifas del patógeno, donde el oomiceto fue incapaz de sobrevivir una vez establecido el contacto con la bacteria (Gómez-Garay et al., 2023). Los principales mecanismos incluyen producción de lipopéptidos antifúngicos (iturinas, fengicinas), formación de biofilms protectores, activación de resistencia sistémica inducida (ISR) y mejora de la absorción de micronutrientes en la rizósfera.

Para estas especies es común encontrar productos comerciales que superan las concentraciones de 1*10^9 ufc/ml y sus aplicaciones mas frecuentes van entre los 2 cc/l foliar.

CÓMO INTEGRARLOS SIN COMPLICAR EL MANEJO

El primer paso es ubicar a cada microorganismo donde mejor mostrará resultados al corto plazo. Trichoderma encaja muy bien en suelo, asociado a labores que ya abren “ventanas” naturales de intervención (trasplante, resiembra, recuperación de raíces, aplicaciones con riego localizado). Bacillus, por su parte, se adapta bien a programas foliares y a rotaciones con otros protectantes compatibles. A partir de allí, se ajustan frecuencias y mezclas para no saturar el calendario ni comprometer compatibilidades.

Consejos clave

Elija productos de calidad. Prefiera marcas y proveedores que declaren concentración viable y cuenten con control de calidad. Verifique fecha de fabricación, vida útil y condiciones de almacenamiento.

Aplique en el momento correcto, evitando horas de radiación extrema.

Respete dosis y frecuencias. Siga la etiqueta. En general solicite las unidades adecuadas de concentración para comparar entre productos comerciales.

Cuide compatibilidades. Evite mezclar microorganismos con productos que puedan inactivarlos (por ejemplo, cobres o pH extremos) en la misma caneca.

Prepare bien la solución. Use agua limpia, controle pH y dureza cuando corresponda, y mantenga agitación suave. Los microorganismos son organismos vivos: requieren condiciones estables durante la preparación y aplicación.

Integre con nutrición y riego. Un suelo estructurado y con buena materia orgánica potencia la colonización. En riego localizado, planifique pulsos que muevan el inóculo hacia la zona activa de raíces sin lixiviarlo en exceso.

Monitoree y ajuste. Registre fecha, producto, dosis, mezcla y observaciones. Evalúe raíces, incidencia de lesiones y comportamiento del fruto. Con dos o tres ciclos completos se pueden afinar dosis y momentos.

 Piense en rotaciones. Combine estrategias biológicas con otras prácticas culturales y con protectantes compatibles para no generar dependencia de un solo modo de acción.

 Empiece focalizado. Si es su primera experiencia, arranque con bloques o lotes piloto, compare con testigos y escale a medida que observe consistencia.

Mantenga expectativas realistas. Los microorganismos no reemplazan todas las medidas del manejo integrado; los mejores resultados aparecen cuando apoyan un programa agronómico ordenado.

Según el gráfico 1, justo en el momento de emergencia de nuevas raíces es muy recomendable la aplicación de microorganismos tipo PGPRs o en el caso que nos compete hoy, aplicaciones de Trichoderma (gráfico 1). Así como, durante todo el crecimiento del fruto, en donde hay posibles ataques de microorganismos, la aplicación de Bacillus y géneros con capacidad enzimática fuerte, son útiles para contrarrestar estas situaciones, actuar como barrera protectora y mejorar la calidad. 

PERSPECTIVA DE INTEGRACIÓN: BIOINSUMOS Y MANEJO AGRONÓMICO HOLÍSTICO

La integración de bioinsumos en sistemas de Hass requiere validación bajo condiciones locales y adaptación escalonada en programas de manejo integrado, partiendo de ensayos de compatibilidad y persistencia en el suelo. Estudios de diversidad microbiana en biofertilizantes comerciales aplicados a P. americana revelan cambios significativos en la composición de comunidades bacterianas rizosféricas, particularmente con formulaciones específicas que mantienen efectividad a largo plazo (Renganathan et al., 2024).

El empleo combinado de Trichoderma y Bacillus, junto a extractos vegetales y enmiendas microbiológicas, genera sistemas más resilientes con menores pérdidas y mejor expresión del potencial genético vegetal. Un enfoque de monitoreo fitopatológico y ajuste técnico permite maximizar el retorno económico y la sostenibilidad ambiental.

Referencias Bibliográficas

Andrade-Hoyos, P., Silva-Rojas, H. V., & Romero-Arenas, O. (2020). Endophytic Trichoderma species isolated from Persea americana and Cinnamomum verum roots with biocontrol activity against Phytophthora cinnamomi. Microorganisms, 8(9), 1377. 

Chamarro-Anaya, L., Barboza-García, A., Baldiris-Avila, R., & Montes-Robledo, A. (2025). Utilizing Trichoderma spp. as an alternative for the promotion of plant growth and the control of anthracnose in avocado crops. Asian Journal of Mycology, 8(1), 129-140.

Gómez-Garay, A., Pérez-Jiménez, M., Cosano, A., Papka, M., Pliego, C., & López-Llorca, L. V. (2023). Evaluation of Bacillus amyloliquefaciens as a biocontrol agent against oak decline disease in Quercus trees. Forest Systems, 32(3), e018. 

Kumar, R., Kumar, A., Patel, J. S., Kumar, S., Kumar, V., Kumar, A., & Chaudhary, A. (2023). Potential and prospects of Trichoderma in plant protection. Applied Biochemistry and Biotechnology, 195(7), 4185-4212.

Renganathan, P., Mora, M. L., & Azcón, R. (2024). Microbial diversity and functional profiles of three commercial biofertilizers used in avocado (Persea americana Mill.) crops. Ciencia & Tecnología Agropecuaria, 25(1), e3251.

Salcedo, R., Quiñones, Y., Melgarejo, L. M., Hernández, M. S., & Fernández-Trujillo, J. P. (2018). Variation in the fatty acid profile and quality of ‘Hass’ avocados preserved during cold storage. Acta Horticulturae, 1194, 1007-1010. 

Tzec-Interián, J. A., Caballero-Mellado, J., Canto-Canché, B., & Mayek-Pérez, N. (2020). Characterization of plant growth-promoting bacteria associated with avocado trees (Persea americana Miller) and their potential use in the biological control of Scirtothrips perseae Mound. Applied Soil Ecology, 147, 103398.